
组织解离是流式检测、磁珠分选、细胞培养的核心第一步,操作规范直接决定细胞活率、纯度与实验成败。
您已驶入组织解离实验专属路线,本路书为您全程智能领航~
途经五大站点:
试剂准备→样本预处理→解离消化→percoll密度梯度分离→流式鉴定
全流程精准踩点、标清操作规范,实验新手也能一路畅通不迷路,稳稳抵达高活率单细胞悬液的终点!
一、 实验前准备-全套试剂耗材
组织样本处理-所用全套试剂耗材
二、 样本取材及预处理
1、样本取材
2、组织解离前预处理-结肠
? 取出整段结肠,置于预冷的 无Ca2?、Mg2?的PBS(PBS) 中
? 清除肠管外的脂肪组织和肠系膜
? 沿肠系膜侧纵向剪开结肠,在PBS中轻柔漂洗,直至粪便完全洗净
? 将结肠横向剪成约 0.5-1.0 cm 的小片段后,进行后续消化处理
3、组织解离前预处理-肺脏
? 迅速取出完整肺脏
? 清洗修剪:立即置于预冷的组织保存液 或PBS中,仔细去除气管、主支气管及肺门周围的脂肪和结缔组织。
? 机械解离,用锋利的眼科剪将其剪碎成 0.5-1 mm3 的小块
三、标准化组织解离步骤参考(以小鼠肺脏为例)
? 实验思路框架
| 样本来源 | C57 Mouse |
| 取材 | Lung |
| 样本处理 | 通过消化酶处理为单细胞悬液 |
1、组织消化解离
(1) 酶消化:将组织块(约100-200mg)转移至离心管,加入 1 mL 组织解离液(难消化可延长)。
(2) 摇床孵育:将离心管置于 37℃恒温水平摇床,以 80-100 rpm 的转速孵育 30-40分钟。
(3) 70μm 细胞筛网过滤,预冷 1×PBS 3-5mL 冲洗筛网;
(4) 4℃、300g 离心 5min,弃上清,4mL 40% Percoll 重悬沉淀;
2、Percoll密度梯度液配置(40%、80%、100%)
100% Percoll溶液:
Percoll细胞分离液与PBS缓冲液(10×)按体积比9:1混合,配制等渗100% Percoll母液
40% Percoll溶液:
用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按体积比4:6混合,配制40%等渗Percoll溶液。
80%Percoll溶液:
用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按体积比8:2混合,配制80%等渗Percoll溶液。
3、Percoll 密度梯度提取目的细胞
(1) 建立密度梯度:用4mL 40% Percoll溶液重悬细胞沉淀。在另一15mL离心管底部预先加入2.5mL 80% Percoll溶液。然后,极其缓慢地 将40% Percoll细胞悬液沿管壁加在80% Percoll液面上,形成清晰界面。
(2) 离心:在 20℃、800×g (升速 1、降速 0)条件下离心 20分钟
(3) 收集目标细胞:离心后,管中液体将分层。目标淋巴细胞和髓系细胞会集中在 40%与80% Percoll溶液的界面处,形成一层白色的云雾状细胞层。小心地用吸管将该层细胞吸出,转移至新管中。
(4) 加预冷 1×PBS,4℃、300g 离心 5min,弃上清;
(5) 细胞染色缓冲液重悬沉淀,备用。
4、 细胞计数,活率测定
? 取10-20μL细胞悬液,与等体积的 台盼蓝染液(0.4%) 混合
? 取适量混合液(通常10μL)加入计数仪专用的一次性计数载玻片
? 将载玻片插入仪器,自动分析细胞总浓度(cells/mL)、活细胞浓度和活率百分比
5、结果展示
小鼠肺脏组织解离结果
小优有妙计--新手避坑核心要点
1. 组织样本如何延长保存时间?
盛有PBS或培养基的容器放冰上,采集的新鲜组织样本直接放在里面短暂转移处理;如需延长组织的保存时间可以用组织保存液abs9474-100mL(爱必信),4℃可保存48小时。
2. 什么情况下需要对组织样本进行纯化和预富集?
组织样本包括免疫组织和非免疫组织。其中,免疫组织:胸腺、脾脏、淋巴结等,免疫细胞占比高;非免疫组织:肿瘤、肝脏、肺脏、肠等,免疫细胞占比低。
当目标细胞在原始样本中占比过低,或存在大量干扰物质时,建议进行预富集,所以非免疫脏器最好过percoll,这是确保下游流式分析或分选实验成功可靠的关键。
常见组织解离试剂盒及结果展示

abs9482,组织解离液;流式-眼睛样本

abs50090,大鼠/小鼠肿瘤组织解离试剂盒

abs50098,小鼠脑组织解离试剂盒