
DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚)是一种小分子荧光染料,属于芳基吲哚类化合物。它在游离状态下荧光较弱,但一旦与双链DNA(特别是富含AT碱基对的区域)的小沟结合,便会发生显著的荧光增强效应,最大激发波长约为358nm,最大发射波长约为461nm,在荧光显微镜下呈现明亮的蓝色荧光。
这种染料具有出色的光物理特性:与DNA结合后荧光量子产率高,光稳定性良好,且与大多数常用荧光探针(如FITC、TRITC、Cy系列)的光谱重叠极小,使其成为多色荧光标记实验中的理想核染色剂。
在众多核酸染料中,DAPI之所以成为细胞生物学、组织学和微生物学实验中无可替代的工具,主要基于以下几个关键优势:
高亲和性与特异性:DAPI对双链DNA具有高度亲和力,染色后信噪比极高,能清晰勾勒出细胞核乃至染色体细节。其染色效果不易受常规固定、透化处理的影响。
卓越的光谱兼容性:其蓝色荧光与其他常见荧光标记(绿色、红色、远红色)几乎不发生串色,方便进行多参数分析。
操作简便与成本效益:染色流程通常仅需几分钟,且所需浓度极低(通常0.1-1μg/mL),经济高效。
活细胞与死细胞染色差异:DAPI在完整细胞膜透过性差,因此常被用于区分细胞膜完整性——死细胞因膜通透性增加而核染色强烈,活细胞则染色微弱或不着色,这一特性在细胞活力分析中尤为有用。
DAPI最常作为免疫荧光实验的“最后一步”。在完成目标蛋白的荧光抗体标记后,用DAPI工作液孵育样本5-15分钟,即可快速获得清晰的细胞核定位背景,使目标蛋白的亚细胞定位(如核内、核周、胞质)一目了然。
在FISH实验中,DAPI染色可产生类似G带型的染色体条带,帮助准确识别特定染色体及定位基因探针的杂交位点,是细胞遗传学诊断的关键步骤。
通过流式细胞术或高内涵成像分析DAPI荧光强度(DNA含量),可以区分G0/G1期、S期和G2/M期细胞。凋亡细胞因基因组DNA断裂,染色质凝集,会呈现特征性的核形态变化(核碎裂、核固缩)及荧光强度改变。
结合碘化丙啶(PI)或7-AAD等仅染死细胞的核酸染料,DAPI可用于更精确的细胞活力评估。活细胞仅微弱染色或不着色,早期凋亡细胞呈现中等强度核染色,晚期凋亡/坏死细胞则同时被DAPI和PI强染色。
由于DAPI的光稳定性及可逆结合特性,它同样适用于需要长时间照射或特殊成像模式(如共聚焦、光片、STORM)的研究,帮助构建细胞核在三维空间中的精确模型。
浓度优化至关重要:DAPI浓度过高会导致背景荧光增强,降低图像对比度;浓度过低则染色不充分。通常推荐先进行浓度梯度测试,找到信噪比最佳的浓度。
避光操作:DAPI溶液及染色后的样本对光敏感,应尽量减少暴露于激发光的时间,以防荧光淬灭。
固定剂选择:醛类固定剂(如多聚甲醛)可获得最佳染色效果。某些醇类固定剂可能影响染色强度。
多色面板设计:虽然DAPI光谱与其他染料重叠小,但仍需通过单染对照组验证滤光片设置,确保通道间无串色。
环境与安全:DAPI被视为潜在的诱变剂,操作时应佩戴个人防护装备,废液按有害化学废物处理。
DAPI并非完美无缺。其主要局限在于:对RNA也有一定亲和力(尽管远弱于DNA),可能导致细胞质背景染色;在活细胞成像中应用有限(主要用于固定样本);无法区分不同细胞类型的细胞核。
近年来,随着荧光探针技术的发展,出现了具有更长斯托克斯位移、更高光稳定性或可逆结合特性的新型核染料。然而,DAPI凭借其无可匹敌的可靠性、经济性与广泛验证,依然在基础研究到临床诊断的各个领域中占据核心地位。新一代的DAPI类似物及兼容DAPI成像通道的荧光蛋白不断涌现,进一步巩固了蓝色核荧光在多重分析中的基石作用。
从观察一个孤立的细胞核到解析复杂组织中的细胞群体,从传统宽场显微镜到最先进的高通量成像平台,DAPI持续为研究人员提供最清晰、最可信的细胞“身份坐标”。这种看似简单的蓝色荧光,已成为连接微观形态与分子功能不可或缺的视觉桥梁。
| 货号 | 产品名称 | 规格 |
|---|---|---|
| abs47047616 | DAPI染色液 | 10mL/50mL |
| abs42016321 | DAPI 二盐酸盐 | 10mg/25mg/100mg |
| abs42147606 | DAPI, dilactate | 25mg |

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