描述：

在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发生凋亡最早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧，这一变化早于细胞皱缩、染色质浓缩、DNA片断化和细胞膜的通透性增加等凋亡现象。Annexin V是一种磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。因此Annexin V被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种核酸染料, 它不能透过完整的细胞膜，但凋亡中晚期的细胞和死细胞由于细胞膜通透性的增加，PI 能够透过细胞膜而使细胞核染红。因此将Annexin V 与PI 匹配使用，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。

操作步骤：

贴壁细胞需用 0.25%的胰酶消化。注意过度消化可损伤细胞。在消化时可加 2％的BSA可防止消化过度。如果用含EDTA的胰酶消化时，注意必须清除EDTA：在标记前用 1×PBS或 1×binding buffer洗涤，清除EDTA，以免残余的EDTA与Ca2+螯合，影响Annexin V的结合。
（1） 用去离子水将 10×Binding Buffer 稀释成 1×Binding Buffer；
（2） 细胞收集：悬浮细胞收集：离心 5 分钟；贴壁细胞：用不含EDTA的胰酶消化收集后（ 注：胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞膜上磷脂酰丝氨酸与Annexin V-FITC 的结合），在室温中，2000rpm 离心 5～10 分钟，收集细胞；
（3） 细胞洗涤：用预冷 1×PBS（4℃）重悬细胞一次，2000rpm 离心 5～10分钟，弃上清洗涤细胞；
（4） 加入 300μL 的 1×Binding Buffer 悬浮细胞；
（5） Annexin V-FITC 标记：加入 5μL 的 Annexin V-FITC 混匀后，避光，室温孵育 15 分钟；
（6） PI 标记：上机前 5 分钟再加入 5μL 的 PI 染色。
（7） 上机前，补加 200μL 的 1×Binding Buffer。
注意：每个反应体系建议细胞数为1×104至1×106个

操作说明：

（1） 使用前低速离心，以免液体积存管盖和管壁；
（2） 本试剂只适用于实验，不适用于临床检测；
（3） PI（propidium iodide，溴化丙锭）有毒性，对眼睛有刺激作用，使用时需戴手套；
（4） Annexin V-FITC 和 PI 是光敏物质，在操作时请注意避光。在处理和标记时，尽可能在暗处进行。在孵育阶段，用铝箔包裹容器或置于抽屉中。细胞标记后，在暗室内用显微镜观察；
（5） 整个操作过程动作要尽量轻柔，勿用力吹打细胞，尽量在 4℃下操作，以免影响细胞状态。
（6） 在细胞洗涤的last一步，请尽量将上清弃净，以免 PBS 残留，有可能会影响实验结果。
（7） 为防止荧光衰变，宜在 1 小时内进行流式检测。
（8） PI 染色时间过长有可能造成检测的凋亡率偏高，建议首先进行Annexin V-FITC 染色，快的话可在上机前 5 分钟再加入 PI 染色。

保存方法：4℃保存6个月；避免反复冻融。