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脂多糖(LPS)技术专题:从基础概念到前沿应用

2026-03-06

一、 脂多糖(LPS)的定义与化学本质

脂多糖,是革兰氏阴性菌外膜特有的一种大型两亲性分子。其化学结构复杂,主要由三个部分组成:

  1. 脂质A:嵌入细菌外膜疏水区的结构锚点,是LPS的生物学活性中心,负责其主要的毒性效应,常被称为“内毒素”。
  2. 核心多糖:连接脂质A和O-多糖的寡糖链,结构相对保守。
  3. O-多糖(或O-抗原):由重复寡糖单元组成的长链,伸向细菌外部。其结构和组成具有高度的菌株特异性,是血清学分型(O-抗原分型)的基础。

LPS分子在细菌生长过程中会以“膜泡”或细胞破裂的形式释放到周围环境中。由于其脂质A部分的保守性,几乎所有革兰氏阴性菌来源的LPS都能被宿主的天然免疫系统识别,从而引发强烈的免疫反应。

二、 LPS的核心特性与研究价值

LPS之所以成为生命科学、医学和药学研究中的重要工具,源于其以下几个关键特性:

  • 强效免疫激活剂:LPS是Toll样受体4(TLR4)和其辅助受体MD-2的高亲和力配体。结合后,会启动下游的NF-κB和MAPK等关键信号通路,导致促炎细胞因子(如TNF-α, IL-1β, IL-6)的爆发式释放。
  • 内毒素活性:即使细菌已被杀死或清除,其释放的LPS仍能持续引发宿主的炎症反应,严重时可导致内毒素休克、弥散性血管内凝血和多器官功能衰竭。
  • 模式识别分子的典范:LPS作为一种典型的“病原相关分子模式”,被宿主体内的“模式识别受体”所识别,这一过程是天然免疫研究的经典模型。

三、 LPS在科学研究中的关键应用领域

基于上述特性,LPS被广泛应用于各类实验中,作为诱导炎症、模拟疾病和探究免疫机制的标准化工具。

1. 免疫学与炎症研究

巨噬细胞/单核细胞激活模型

应用:在体外培养的巨噬细胞系(如RAW 264.7)或原代细胞(如小鼠腹腔巨噬细胞、人外周血单核细胞)中加入LPS,是研究细胞激活、极化(M1型)、细胞因子产生、吞噬功能以及一氧化氮合成的标准方法。

检测指标:通过ELISA、流式细胞术、qPCR或Western Blot等技术检测上清或细胞内的TNF-α、IL-6、IL-1β等因子水平,或检测iNOS的表达及NO的产量。

信号通路研究

应用:利用LPS精确刺激细胞,可以清晰地描绘从TLR4受体激活到下游NF-κB、IRF3或MAPK通路活化的全过程。

研究方法:使用特异性通路抑制剂、基因敲低/敲除技术,结合磷酸化蛋白检测(如p-IκBα, p-p65, p-p38, p-ERK, p-JNK),可以深入解析特定分子在信号传导中的作用。

2. 疾病模型构建

脓毒症/内毒素休克模型

应用:通过给实验动物(最常用的是小鼠)注射高剂量的LPS,可以快速、可重复地建立急性全身性炎症反应综合征和脓毒症模型。

研究目的:用于评估潜在抗炎药物的疗效,研究脓毒症的病理生理机制,以及观察多器官功能障碍的发生发展。 >

神经炎症与神经系统疾病模型

应用:通过全身或中枢直接注射LPS,可诱导神经炎症。该模型常用于研究神经退行性疾病(如阿尔茨海默病、帕金森病)的炎症假说。

观察指标</strong:小胶质细胞(大脑中的巨噬细胞)的激活、促炎因子在中枢神经系统的水平、神经元损伤以及动物行为学的改变。

急性肺损伤模型

应用:通过气道内滴注LPS,可模拟由细菌感染引起的急性肺损伤或急性呼吸窘迫综合征的早期病理特征。

评估参数:肺组织病理学评分、肺泡灌洗液中炎症细胞计数和蛋白浓度、肺水肿程度等。

3. 细胞培养与试剂质量控制

无菌与无内毒素控制

应用:在细胞培养,特别是免疫细胞、干细胞或原代内皮细胞的培养中,微量的LPS污染就足以显著改变细胞的生长状态、基因表达和功能。因此,确保培养基、血清、胰蛋白酶等试剂以及实验耗材“无内毒素”至关重要。

检测方法:使用鲎试剂进行内毒素检测是目前最灵敏和特异的黄金标准方法。该实验要求所有操作环节都在无热原的条件下进行。

4. 疫苗与佐剂研究

应用:LPS本身毒性过强,不能直接用作人体佐剂。但其衍生物,如单磷酰脂质A,保留了通过TLR4激活免疫系统的能力,同时毒性大大降低,已被成功开发为安全有效的人用疫苗佐剂,用于增强抗原的免疫原性。

四、 实验设计与注意事项

在使用LPS进行实验时,研究者需谨慎考虑以下关键点:

  • 来源与血清型:不同细菌来源(如大肠杆菌、沙门氏菌)和血清型的LPS,其结构和活性强度存在差异。大肠杆菌 O55:B5O111:B4 是实验室最常用的两种,但选择需与实验目的匹配。
  • 剂量依赖性:LPS的效应具有强烈的剂量依赖性。低剂量可能仅引起轻微的细胞因子分泌,而高剂量则可能导致细胞凋亡或动物死亡。必须通过预实验确定合适的浓度或剂量。
  • 溶解与储存:LPS易形成聚合物,建议使用无热原的水或生理盐水配制高浓度储存液,并通过涡旋或超声助溶。应分装后于-20°C冻存,避免反复冻融。
  • 实验对照:必须设立严格的阴性对照(如不含LPS的培养基或溶剂)和可能的阳性对照,以确保实验系统的可靠性。

五、 总结

脂多糖(LPS)作为一种强大而经典的生物学工具,其价值在于它能高度特异性地模拟革兰氏阴性菌感染的核心环节。从基础的免疫细胞激活,到复杂的全身性脓毒症和神经退行性疾病模型,LPS的应用贯穿了现代生命科学研究的众多领域。深入理解其作用机制,并严谨地设计和使用LPS实验模型,将继续为揭示宿主-病原体相互作用、炎症性疾病机理以及开发新型治疗策略提供不可或缺的洞见。

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